规格

性状 ：                      本产品为黄色或橙黄色粉末，使用时将固体溶解于无水DMSO中

纯度（HPLC）:          98%以上

荧光光谱图：             符合实验要求

NMR光谱图：            符合实验要求

处理条件

保存方法 ：                避光冷冻

Fura 2-AM是一种可以穿透细胞膜的荧光染料。Fura 2-AM的荧光比较弱，最大激发波长为369 nm，最大发射波长为478 nm，并且其荧光不会随钙离子浓度改变而改变。Fura 2-AM进入细胞后可以被细胞内的酯酶剪切形成Fura 2，从而被滞留在细胞内。Fura 2和钙离子结合后，最大激发波长为335 nm(最大激发波长随离子浓度的的不同而有所不同)，最大发射波长为505nm。实际检测时推荐使用的激发波长为340nm，发射波长为510 nm。如果做双波长检测，则推荐使用的激发波长为340 nm和380 nm。

Fura 2可以和钙离子(Ca²⁺)结合，结合钙离子后在330-350 nm激发光下可以产生较强的荧光，而在380 nm激发光下则会导致荧光减弱。这样就可以使用340 nm和380 nm这两个荧光的比值来检测细胞内的钙离子浓度，可以消除不同细胞样品间荧光探针装载效率的差异，荧光探针的渗漏，细胞厚度差异等一些误差因素。

Ex ：340～380 nm

Em ：510 nm

1、用HBSS溶液稀释1-5 mmol/l的Fura 2-AM母液，配制成1-5 μmol/l的Fura 2-AM工作液。

（此浓度仅供参考，请根据具体实验要求自行调整）

例如:1 mmol/l母液配制1 ml浓度为5 μmol/l工作液的方法：用1 ml HBSS溶液稀释5μl母液即可。

如果Fura 2-AM进入细胞的效果不好，可使用Pluronic^® F-127，后者可以防止Fura 2-AM在缓冲液里

聚合并能促进其进入细胞。

*Pluronic^® F-127先用DMSO溶解至浓度为20%（W/V），然后根据实验需要直接加入Fura 2-AM工作液

中至终浓度为0.04-0.05%（此浓度仅供参考，请根据具体实验要求自行调整）。

2、取出预培养的细胞，除去培养基，使用HBSS溶液洗涤细胞3次。

如果使用含血清的培养基，血清中的酯酶会分解AM体，从而降低Fura 2-AM进入细胞的效果。

另外含有酚红的培养 基会使本底值略微偏高，所以加工作液之前需尽量去除培养基残留。

3、加入Fura 2-AM工作液，溶液量以覆盖细胞为准。

4、37℃细胞培养箱孵育10-60分钟，除去Fura 2-AM工作液。关于孵育的时间，如果首次做实验不能定

建议先孵育30分钟，看荧光效果：如果细胞死亡较多，缩短时间；荧光强度太弱，延长时间。

5、用HBSS溶液洗涤细胞3次，以充分去除残留的Fura 2-AM工作液。然后加入HBSS溶液覆盖细胞。

6、37℃培养箱孵育约20-30分钟，以确保AM体在细胞内的完全去酯化作用。如果细胞内酯酶活性较低，

建议严格按照此操作进行；酯酶活性高的细胞实验，可以忽略此步。

7、用流式细胞仪或其它设备检测细胞，激发波长380 nm（Fura 2）和340 nm（钙离子-Fura 2），

发射波长510 nm。

1、试剂容易吸潮，从冰箱取出后，请确认在干燥的环境放至室温后再开封。由于试剂极其微量，

开封前，请轻弹管壁几次，以保证粉末落入管底。

2、第一次使用时, 建议母液即配即用。试剂溶解后尽可能在短时间内使用，以保证实验效果。

3、溶解液DMSO需要保证新鲜无水，否则将会导致AM体水解，使荧光染料无法进入细胞，影响实验效果。

4、母液遇水极易分解，如果不能一次用完，建议分装保存，例如分装成5 μl/管，用封口膜封口，并用铝箔纸包裹，

放在一个密闭性能好的塑料袋中，并放入一包干燥剂，在≤-20℃密封避光保存。

5、建议您在正式实验前先摸索一下细胞量、钙离子荧光探针的终浓度、培养时间等，找到最佳实验条件。

F_λ1与F_λ2分别是λ1与λ2激发时的总荧光强度，S_{f 1}与S_{f 2}是两种紫外光激发时游离Fura-2 (未结合Ca²⁺)的荧光系数，

Cf是游离的Fura-2浓度，Sb1与Sb2是相应波长下结合Ca2+后Fura-2的荧光系数，Cb是结合Ca²⁺的Fura-2浓度

1) G. Grynkiewicz, M. Poenie and R. Y. Tsien, “A New Generation of Ca2+ Indicators with Greatly Improved Fluorescence Properties”, J. Biol. Chem., 1985, 260, 3440.

2) D. A. Williams, K. E. Fogarty, R. Y. Tsien and F. S. Fay, “Calcium Gradients in Single Smooth Muscle Cells Revealed by the Digital Imaging Microscope Using Fura-2”, Nature, 1985, 318, 558.

3) R. Y. Tsien, T. J. Rink and M. Poenie, “Measurement of Cytosolic Free Ca2+ in Individual Small Cells Using Fluorescence Microscopy with Dual Excitation Wavelengths”, Cell Calcium, 1985, 6, 145.

4) D. A. Williams and F. S. Fay, “Intracellular Calibration of the Fluorescent Calcium Indicator Fura-2”, Cell Calcium, 1990, 11, 75.

5) W. Almers and E. Neher, “The Ca Signal from Fura-2 Loaded Mast Cells Depends Strongly on the Method of Dye-loading”, FEBS Lett., 1985, 192, 13.

6) G. H. R. Rao, J. D. Peller and J. G. White, “Measurement of Ionized Calcium in Blood Platelets with a New Generation Calcium Indicator”, Biochem. Biophys. Res. Commun., 1985, 132, 652.

7) H. Ozaki, K. Sato, T. Satoh and H. Karaki, “Simultaneous Recordings of Calcium Signals and Mechanical Activity Using Fluorescent Dye Fura 2 in Isolated Strips of Vascular Smooth Muscle”, Jpn. J. Pharmacol., 1987, 45, 429.

8) M. Mitsui, A. Abe, M. Tajimi and H. Karaki, “Leakage of the Fluorescent Ca2+ Indicator Fura-2 in Smooth Muscle”, Jpn. J. Pharmacol., 1993, 61, 165.